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RealPure植物种子RNA提取试剂盒
RealPure植物种子RNA提取试剂盒
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RealPure®Plant Seed RNA Extraction Kit RealPure®植物种子RNA提取试剂盒
试剂盒内容及保存: 试剂盒组成 RTR2308-01 (50次) 贮存方式 裂解液RSL 30 ml 常温 缓冲液PRS 3 ml 常温 裂解液RL plus 30 ml 常温 去蛋白液RD 30 ml 常温 漂洗液RW(浓缩液) 25 ml 首次使用按照标签加入无水乙醇 常温 RNase-free水 5 ml 4℃ DNA清除柱CS(RNase-free) 50个 常温 RNA吸附柱CR(RNase-free) 50个 常温 收集管 100个 常温 2 ml离心管(RNase-free) 50个 常温 1.5 ml离心管(RNase-free) 150个 常温 说明书 1份  
储存条件和效期: RNase-free水4℃保存;其他试剂在常温(25℃左右)干燥条件下,可保存1年。试剂盒常温运输。

产品简介:: 本试剂盒可从植物种子中快速提取总RNA,通过独特的裂解系统,快速去除植物组织中的淀粉、多糖等成分,释放RNA。试剂盒配套缓冲液PRS(Phenolic Remove Solution)可以去除种子中的多糖多酚对RNA提取的影响。另外,试剂盒配套DNA清除柱,可以消除基因组DNA的污染。整个提取过程仅需20-30分钟内即可完成,可以从50mg植物种子中提取数十微克高纯度RNA,基本没有DNA和蛋白的污染,可用于Northernblot、Dot blot、polyA筛选、体外翻译、RNase 保护分析和分子克隆等实验。 已经测试的植物种子有:拟南芥干种子、小麦干种子、水稻干种子、芝麻种子、玉米干种子、豌豆种子、红豆干种子、绿豆干种子、向日葵种子、西瓜种子、油莎豆、花生、大豆等。另外,该试剂盒也适合于提取块茎、鳞茎的RNA。 植物RNA提取介绍: 由于植物种类繁多,不同的植物种类和部位的样品使用本试剂盒效果不同。我们已经测试成功的植物列表如下: 植物样品种类 提取植物材料 是否添加缓冲液PRS 推荐裂解液 RNA质量度 RNA得量 A260/280 A260/230 简单植物叶片、幼苗、茎 玉米叶片 - 裂解液RL     30-40 μg/100 mg 小麦叶片 - 裂解液RL     40-50 μg/100 mg 水稻叶片 - 裂解液RL     45-55 μg/100 mg 拟南芥叶片 - 裂解液RL     10-15 μg/100 mg 烟草叶片 - 裂解液RL     40-55 μg/100 mg 绿萝叶片 - 裂解液RL 1.87 2.21 5-10 μg/100 mg 多糖多酚植物叶片 银杏叶片 + 裂解液RL     10-15 μg/50 mg 松针 + 裂解液RL     10-15 μg/50 mg 毛白杨叶片 + 裂解液RL     20-30 μg/50 mg 冬青叶片 + 裂解液RL     1-5 μg/50 mg 法国梧桐样品 + 裂解液RL 2.14 1.97 10-20 μg/50 mg 种子 黄豆种子 + 裂解液RSL     40-50 μg/50 mg 花生种子 + 裂解液RSL     20-25 μg/50 mg 玉米种子 +/- 裂解液RSL 2.00 2.37 20-40 μg/50 mg 水稻种子 + 裂解液RSL     5-10 μg/50 mg 小麦种子 +/- 裂解液RSL 2.03 2.28 10-15 μg/50 mg 高粱种子 + 裂解液RSL     5-10 μg/50 mg 绿豆种子 + 裂解液RSL     5-10 μg/50 mg 油莎豆 + 裂解液RSL 2.26 2.17 7-15 μg/50mg 拟南芥种子 + 裂解液RSL 2.17 1.98 3-5μg/50mg 南瓜籽 + 裂解液RSL 2.27 1.68 10-15μg/50mg 水果果肉 芒果 + 裂解液RL     1-2 μg/50 mg 西红柿 + 裂解液RL     2-3 μg/50 mg 苹果 + 裂解液RL     3-5 μg/50 mg 西瓜 + 裂解液RL     1-2μg/50 mg 香蕉 + 裂解液RL     2-3 μg/50 mg 梨 + 裂解液RL     3-5 μg/50 mg 真菌材料 香菇菌丝体 - 裂解液RL/RSL     2-3 μg/100 mg 平菇菌丝体 - 裂解液RL     2-3 μg/100 mg 块茎 马铃薯 +/- 裂解液RSL     10-15 μg/50 mg 紫薯 +/- 裂解液RSL 2.35 1.91 2-5 μg/50 mg 注:+ 表示添加,-表示不添加, +/- 表示添加不添加均可, NA表示无数据
准备工作: 1操作前在裂解液RSL中加入β-巯基乙醇至终浓度5%,如500μl RSL中加入25μl β-巯基乙醇。此裂解液最好现用现配。配好的RSL4 ℃可放置3天。 2按照标签所示在漂洗液RW中加入无水乙醇(自备),混匀后盖紧瓶盖后常温贮存备用。 3准备65℃水浴 4所有离心步骤均在常温下进行。
操作步骤: 1. 样品处理: 1.1 1.5 ml RNase-free离心管中加入500 μl裂解液RSL(使用前请先检查是否已加入β-巯基乙醇),50μl缓冲液PRS混匀备用。    注:缓冲液PRS有助于去除样品中的多糖和多酚,禾本科植物如水稻,小麦和玉米的种子RNA提取中可以不用添加;如不能判断材料是否含多糖和多酚,请加入缓冲液PRS。 1.2将种子加入到液氮预冷的研钵中,用研杵研磨,其间不断加入液氮,直至研磨成粉末状。取20-50 mg粉末迅速加入到离心管中,涡旋剧烈震荡混匀,65℃水浴放置5分钟,间歇混匀。 注:一定不要加入超过50 mg的粉末,否则样品超过裂解液RSL的裂解能力导致RNA提取失败。 2. 离心取上清: 13,000 rpm离心5min,小心吸取收集管中的上清至1.5 ml RNase-free的离心管中,吸头尽量避免接触收集管中的细胞碎片沉淀。一般可获得400 μl上清。 注:一些种子富含油脂如花生种子,离心后脂肪位于最上层,用吸头穿越脂肪层吸取上清;禾本科植物如水稻,小麦,玉米,高粱种子会有大量沉淀生产。 3. 去除基因组污染: 上清中加0.5倍体积的无水乙醇(如400 μl上清中加入200 μl无水乙醇),混匀(此时可能会出现沉淀),得到的溶液和沉淀一起转入DNA清除柱CS(清除柱放入收集管中)中,13,000 rpm离心2分钟,弃掉收集管中的废液。 注:吸附柱的最大容积是850 μl,超过此体积分步上柱,确保全部溶液都通过过滤柱,如果膜上有残留液体,延长离心时间至5分钟,保证膜上无残留液体。 4. 洗脱RNA:   将DNA清除柱放入2 m l RNase-free离心管中,在清除柱中加入500μl 裂解液RL plus,13,000 rpm离心1分钟,收集滤液(注意:RNA在滤液中,不要丢弃),滤液中加入250 μl无水乙醇,此时可能会出现沉淀,立即混匀,不要离心。 5. RNA挂柱:   将全部溶液加入到RNA吸附柱CR中(吸附柱放入收集管中),13,000 rpm离心2分钟,弃废液。 注:确保溶液全部过滤到收集管中,膜上无残留,如有必要,可以延长离心时间至5分钟。 6. 去除RNA中的蛋白污染: 向RNA吸附柱CR中(吸附柱放入收集管中)加入500 μl 去蛋白液RD,13,000rpm离心1分钟,弃废液。 7. 去除RNA中的其他杂质: 向RNA吸附柱CR中加入700μl漂洗液RW(使用前请先检查是否已加入乙醇), 13,000 rpm离心1分钟,弃废液。 8. 进一步去除RNA中的其他杂质: 向吸附柱CR中加入500μl漂洗液RW (使用前请先检查是否已加入乙醇),13,000 rpm离心1 分钟,弃废液。 9.  关键步骤:彻底去除吸附柱上的残余乙醇: 将吸附柱CR放回收集管中,确保盖好吸附柱管盖,13,000 rpm将吸附柱CR空甩离心2 分钟,去除吸附柱上的残余液体。 注:此步骤目的是将吸附柱中残余的漂洗液去除,如果有漂洗液残留,可能会影响后续的RT等实验操作。 10. 洗脱得到RNA: 将RNA吸附柱CR转入一个新的1.5 ml RNase-free离心管中,向吸附柱O型垫圈中央悬空加入50-100 μl RNase-free水(事先65℃预热可提高洗脱效率),盖好吸附柱管盖,常温放置2分钟,13,000rpm离心2 分钟。 注:确保水要加到膜的中央,不要贴壁加入;洗脱缓冲液体积不应少于50μl,体积过小影响回收效率。 11. RNA贮存: RNA样品-80℃中保存。
RNA产量和质量的评估: 1.RNA产量: 用分光光度计测定OD260的吸光值来计算RNA产量。将RNA按照一定的比例稀释于TE溶液(10mMTris pH8.0,1mMEDTA)中,根据以下公式计算: A260×稀释倍数×40=μgRNA/ml 注:测定OD值时,尽量不要用RNase-free水稀释RNA,因为RNase-free水pH较低,测定的OD值偏低。 2.RNA质量: 凝胶电泳检测:凝胶电泳中,完整的RNA应该有两条主带:28S和18S,并且28S亮度应该与18S相当或是其亮度的2倍。可以使用普通的1×TAE琼脂糖凝胶电泳,凝胶浓度1.5%,可以使用高电压,短时间电泳,如7V/cm电泳,20分钟。建议使用D2000DNA ladder(Cat:RTM415)作为Marker。植物28S rRNA迁移率与1500 bp类似,18S rRNA迁移率与1000bp类似。 吸光值检测:可以用A230,A260和A280的数值表示RNA的纯度。纯净的RNA的A260/A280比值应该为2,我们得到的RNA样品比值应在1.8-2.2之间,如果比值低于1.8,表明RNA样品中蛋白污染比较严重。 A260/A230比值应该在2-2.2之间。如果此比值低于2,表明RNA样品中有胍盐,多糖的污染。 实验示例:
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